【Tech Note】運用自動化水鏡系統提升高內涵影像精度與品質
【前言】
在面對如3D培養、神經再生或是高密度培養這類會形複雜生物影像的實驗中,如何採擷到最佳對比的影像成為後續分析的關鍵步驟。本文將探討使用『自動化水鏡』是否幫助使用者輕鬆達成此一目的
【材料&方法】
本文中的所有測試均在96/384 孔盤或市售的器官晶片(organ-on-chip)盤中進行。
測試中使用空氣鏡或水鏡的實驗流程都相同,包括雷射自動對焦等環節。
此外,我們用低倍物鏡對全微孔盤拍攝,自動辨識稀有目標樣品後,使用高倍的水鏡自動重新成像。
【實驗耗材】
Corning® spheroid microplates (384 well 格式)
Mimetas OrganoPlate® 3-Lane
InSphero Akura™ 384 孔盤
Greiner SensoPlate™ - 96 與 384孔盤
【細胞】
3D InSight™ 腫瘤微組織(InSphero)
HUVEC(人類原生內皮細胞)
HCT-116(人類結腸直腸癌細胞)
Caco-2(人類結腸直腸癌細胞)
PC-12(大鼠神經母細胞瘤細胞)
【時間有限的人,可以先看結論】
【更多結果】
使用rotenone和chloroquine處理而得劑量反應曲線,來進行粒線體融合和膜完性試驗。
粒線體的形成和完整性對於了解疾病機制與毒性評估很重要。
粒線體的長度、亮度和數量會在粒線體回收(recycling)、代謝或凋亡過程中改變。
通過 MetaXpressⓇ 軟體中的形狀工具來確定成像後光強度和粒線體顆粒,工具中可自訂標準來測量“顆粒性(granularity)”、“纖維數(fibers)”或“區塊(segmentation)”等參數。
這些參數可以用於計算各種化合物的劑量效應和有效濃度。
圖2. 用chloroquine(粒線體回收抑制劑)和rotenone(氧化磷酸化抑制劑)在指定濃度下處理 PC12 細胞 24 小時。
用 MitoTracker Orange CMTMRos(黃色)和 Hoechst(未顯示)染色,再用40X 水鏡和非水鏡分別拍攝影像。
使用 MetaXpress 軟體分析,辨識“顆粒性(左)”或“纖維數(右)”
分割區塊遮罩圖顯示了完整的顆粒、纖維或區塊定量,計算 EC50(四重複樣品)
水鏡可以提高影像品質,更準確地計算顆粒數,進而獲得更高的Z值。
2、器官晶片 (Organoid)
拍攝血管新生抑制劑處理之3D 血管新生器官晶片
水鏡提高不平整樣本的解析度和球形度,對器官晶片研究是一大優勢。此處對MIMETAS OrganoPlate 3-Lane模型晶片上的腸道和血管新生樣品進行成像。
圖3-A、依照Mimetas 提供步驟培養 Caco2 細胞,形成完整的管狀模型。用 Hoechst 和 phalloidin (conjugated with AlexaFluor-488 ) 對細胞進行染色,並進行Z軸共軛焦掃描成像。使用40倍水鏡拍攝的底層(左)和頂層(右)影像。
圖3-B、拍攝Phalloidin-AlexaFluor 555、Hoechst 和anti-VE cadherin染色的 HUVEC 細胞的血管新生模型,用 20X水鏡拍攝50層 z 軸的2D投影顯示未處理的細胞(右)和抗血管新生化合物處理的細胞(左)。
3、三維掃描(Quick ID、靶點成像)
化合物處理 HCT116(結腸癌細胞)生成之腫瘤球(spheroid)的細胞死活試驗。
對細胞球活力的定量測量
3D 腫瘤模型越來越多地用於癌症研究。在此範例中,我們計算從 HCT116 結腸癌細胞培養形成的3D球體的細胞死活率,來評價藥物對腫瘤球的毒性作用。
圖5. 用 4000個HCT116 細胞在 U 型底 384 孔盤中的培養形成細胞體。抗癌化合物處理48小時候用 Hoechst 和 EthD-1 染色3小時
(A)使用20X 物鏡(水鏡或者非水鏡)對孔盤進行共軛焦成像
(B)將11張10um間隔的影像進行Z軸掃描並進行Maximum演算法平面投影,然後使用細胞核定量模組或客製化分析模組分析。使用細胞核或活細胞的數量來計算EC50作為化合物評估。由於使用水鏡對整個球體中細胞的定量更加精確,因此得到更大的Z值。
留言
張貼留言